檢測蛋白質間相互作用的實驗方法有哪些？

檢測蛋白質間相互作用的實驗方法有哪些？

 1. 生化方法

●共純化、共沉淀，在不同基質上進行色譜層析 

●蛋白質親和色譜 基本原理是將一種蛋白質固定于某種基質上(如Sepharose)，當細胞抽提液經過改基質時，可與改固定蛋白相互作用的配體蛋白被吸附，而沒有吸附的非目標蛋白則隨洗脫液流出。被吸附的蛋白可以通過改變洗脫液或者洗脫條件而回收下來。   

 2. 等離子表面共振技術(Surface plasmon resonance) 

該技術是將誘餌蛋白結合于葡聚糖表面，葡聚糖層固定于幾十納米厚的技術膜表面。當有蛋白質混合物經過時，如果有蛋白質同“誘餌”蛋白發(fā)生相互作用，那么兩者的結合將使金屬膜表面的折射綠上升，從而導致共振角度的改變。而共振角度的改變與該處的蛋白質濃度成線性關系，由此可以檢測蛋白質之間的相互作用。該技術不需要標記物和染料，安全靈敏快速，還可定量分析。 

 3. 遺傳學方法 

 使某處發(fā)生缺損，檢測對其他地方的影響。 

●基因外抑制子。基因外抑制子是通過一個基因的突變 來彌補原有基因的突變。比如相互作用的蛋白A和B，如果A發(fā)生了突變使兩者不再相互作用，此時B如果再發(fā)生彌補性突變就可以使兩者的相互作用恢復，那么B就是A的基因外抑制子。 

●合成致死篩選 指兩個基因同時發(fā)生突變會產生致死效應，而當每個基因單獨發(fā)生突變時則無致死效應。用于分析兩個具有相同重要蛋白之間的相互作用。

 4. 雙雜交技術 

原理基于真核細胞轉錄因子的結構特殊性，這些轉錄因子通常需要兩個或以上相互獨立的結構域組成。分別使結合域和激活域同誘餌蛋白和獵物蛋白形成融合蛋白，在真核細胞中表達，如果兩種蛋白可以發(fā)生相互作用，則可使結合域和激活域在空間上充分接近，從而激活報告基因。 缺點：自身有轉錄功能的蛋白會造成假陽性。融合蛋白會影響蛋白的真實結構和功能。不利于核外蛋白研究，會導致假隱性。

 5. 熒光共振能量轉移技術 

指兩個熒光法色基團在足夠近(<100埃)時，它們之間可發(fā)生能量轉移的現(xiàn)象。熒光共振能量轉移技術可以研究分子內部對某些刺激發(fā)生的構象變化，也能研究分子間的相互作用。它可以在活體中檢測，非常靈敏，分辯率高，能夠檢測大分子的構象變化，能夠定性定量的檢測相互作用的強度。